第一节 植物组织培养

组织培养是指在离体条件下,把植物的一小部分组织或器官,如一个茎尖、一小块叶或一小段茎,接种于培养基上,使它们重新形成完整植株的一种方法。这种方法的依据是植物 7 体的任何一个细胞都具有“全能性”。所谓细胞的全能性,是指植物体上任何一个器官中已分化成熟的细胞,都具有生成完整植物体的遗传本领,把它们在离体条件下进行培养,就能生成一个完整的植株。

组织培养在培育农作物新品种、快速繁育优良植株系、获得无病毒植物等方面,具有重要作用,已开始成为一项全新的生产技术。

一、组织培养所需的用具用品

接种箱(图 1—1)、培养箱、手提式高压灭菌锅、冰箱、粗天平、分析天平(精确度为 0.1 毫克)、三角瓶(25~50 毫升)或试管(直径 16 毫米)、烧杯(250、500、1000 毫升)、移液管(0.2、0.5、1.0 毫升)、量筒(50、100、500 毫升)、漏斗(直径 4~5 厘米)、培养皿(直径 8~10 厘米)、细口瓶、镊子、剪子、手术刀、酒精灯、配制培养基所需的各种化学试剂、灭菌剂等。8 二、组织培养的方法和步骤

(一)配制培养

基培养基是组织培养中植物材料赖以生存和生长的基地。进行组织培 养,首先必须配制培养基。培养基的配制包括确定配方、制备母液、具体操作和灭菌保存等四个步骤。

  1. 确定配方。培养基的配方很多。少年儿童进行组织培养,所用植物材料多为一般种类,可采用 MS 培养基。

MS 培养基的配方如下(单位:毫克/升)

硝酸铵(NH4NO3)

1650

硝酸钾(KNO3)

1900

磷酸二氢钾(KH2PO4)

170

硫酸镁(MgSO4·7H2O)

370

氯化钙(CaCl2·2H2O)

440

铁盐:5.57 克的硫酸亚铁(FeSO4·7H20)和 7.45 克乙二胺四乙酸二钠

(Na2-EDTA)溶于 1 升水中的溶液

5 毫升/升

硫酸锰(MnSO4·4H2O) 22.3

硫酸锌(ZnSO4·7H2O) 8.6

硼酸(H3BO3) 6.2

碘化钾(KI) 0.83

钼酸钠(NaMoO4·2H2O) 0.25

硫酸铜(CuSO4·5H2O) 0.025

氯化钴(CoCl2·6H2O) 0.025

甘氨酸 2

盐酸硫胺素 0.4

盐酸吡哆素 0.5

菸酸 0.5

肌—肌醇 100

蔗糖 30000

琼脂 10000

pH 5.8

MS 培养基配方中不包括激素。培养基中激秦加入的种类和数量,在组织培养的不同阶段,常不相同。

  1. 制备母液。配制培养基,虽然可按配方所列成分和用量直接制成,但这样做,每次配制培养基都要对几十种化学药品进行称量,十分费力。正确的做法是把培养基中的各种成分,按原量 10 倍、100 倍或 1000 倍称量,配成浓缩液,这种浓缩液叫母液。这样,每次配制培养基时,取其总量的 1/10、1/100 或 1/1000,加以稀释,即成培养液。现将培养基中各类物质制备母液的方法说明如下:
  1. 大量元素母液大量元素母液是指硝酸铵、硝酸钾、磷酸二氢钾、硫酸镁和氯化钙等用量较大的几种化合物的母液。制备时,以其 10 倍的用量, 分别称出并进行溶解,以后按顺序混在一起,最后加蒸馏水,使其总量达到 1 升,即成大量元素母液。

  2. 微量元素母液微量元素母液是指硫酸锰、硫酸锌、硼酸、碘化钾、钼酸钠、硫酸铜、氯化钴等用量微小的化合物的母液。因为用量少,为称量方便和精确起见,应配成 100 倍或 101000 倍的母液。配制时,把每种化合物

的用量加大 100 倍或 1000 倍,逐次溶解并混在一起,即成微量元素母液。

  1. 铁盐母液单独配制,可按 MS 配方中的规定进行配制。

  2. 有机物质母液主要指氨基酸和维生素类物质。它们都是分别称量、分别配成所需要的浓度(0.1~10 毫克/毫升),是只含一种成分的母液。

  3. 植物激素母液常用的植物激素有生长素、细胞分裂素和赤霉素三种。植物激素的使用浓度很低,一般为 0.01~10 毫克/升。可按用量的 100 倍或 1000 倍配制母液,制备时要单个称量,分别配成。

以上各种母液,都要放入冰箱中保存,以免变质、长霉。至于蔗糖、琼脂等,可按配方中要求随称随用。

  1. 配制培养基的具体操作方法。
  1. 根据配方要求,用量筒或移液管从每种母液中分别取出所需要的用

量,放入同一烧杯中,并用粗天平称取蔗糖、琼脂放在一边备用。

  1. 称好的琼脂加蒸馏水 300~400

    毫升,加热并不断搅拌,直至煮沸溶解呈透明状,再停止加热。

  2. 将(1)中所取的各种物质(包括蔗糖),加入煮好的琼脂中,再加水至 1000

    毫升,搅拌均匀,配成培养基。

  3. 用 1N

    的氢氧化钠或盐酸,滴入(3)中的培养基里,每次只滴几滴,滴后搅拌均匀,并用 pH 试纸测 pH 值,直到将培养基的 pH 值调到 5.8。

  4. 把配好的培养基用漏斗分装到锥形瓶(或试管)中,并用棉塞塞紧瓶口,瓶壁写上号码。瓶中培养基的量约为容器容量的

    1/4 或 1/5。

  1. 培养基的灭菌与保存。为防止培养基被菌类污染,培养基须放入高压灭菌锅中灭菌 20 分钟。灭菌后的培养基放在 10℃下保存备用。

(二)选择培养材料

  1. 材料选择的依据。虽然所有的植物细胞都具有全能性,但同一植株上不同部位的组织器官,其全能性的表现能力各有不同。一般来说,处于生长状态比较幼嫩的组织器官,或扦插容易成活的组织器官,全能性的表现能力较强,容易培养。所以应该选择这样的组织器官作为培养材料,如幼根、幼茎、幼叶、幼花、幼果和茎尖等。

  2. 材料的大小。培养材料的大小,没有严格限制,但太小不易产生愈伤组织,太大又会使培养瓶难以容纳,一般应在 0.5 厘米左右。

  3. 材料的灭菌。材料选择好以后,接种前应进行表面灭菌。常用的灭菌剂有安替福民(次氯酸钠溶液)和氯化汞。前者的浓度应为 6%~10%,后者浓度为 0.1%~0.5%。

(三)接种

接种是指将灭过菌的材料,在无菌的情况下切成小块放入培养基的过程。接种在接种箱内进行,程序如下:

  1. 在接种箱中摆好接种时所需要的酒精灯、70%的酒精棉球、镊子、手术刀、火柴、培养基等。

  2. 接种箱内用紫外线灯灭菌 20 分钟。

  3. 放入已灭菌的接种材料(用培养皿盛取),同时,操作人员用酒精棉球擦手,并对接种工具用酒精灯火焰烧灼。

  4. 用手术刀把材料切割成若干片段,迅速接种入培养基中。接种时,锥形瓶口(或试管口)应斜向火焰,在酒精灯火焰附近操作。

  5. 材料接种后,将锥形瓶口(或试管口)在酒精灯火焰上转动烧一遍, 盖好瓶盖,注明材料名称及接种日期。

(四)培养

被接种在培养基上的离体培养材料的片段,叫外植体。外植体连同培养基应放入培养箱内进行培养。培养箱可用钢材作框,镶以玻璃,体积可与接种箱相同。

  1. 培养条件。外植体在生长分化中要求较高的温度和较强的光照。
  1. 温度培养箱的温度应保持在 25℃~28℃。为了保持温度恒定,可采用电炉连接继电器和一根可控温度计的方法来调节。

  2. 光照培养箱中的光照,可以安装日光灯来解决。光照强度应为2000~3000 勒克斯,光照时间每天约为 10~12 小时。

  1. 在培养过程中外植体的分化。在培养过程中,外植体逐渐发生分化。

由于外植体所属植物种类和器官组织类型不同,又由于培养基中植物激素等因素的影响,使外植体沿着不同途径进行分化。其分化途径一般有以下三种:

  1. 侧芽增殖把茎尖或侧芽作为培养材料培养,在培养基中加入细胞分裂素(有时也同时加入少量生长素),外植体就会不断分化生长,形成侧芽芽丛。如果反复对芽丛切割和转移到新的培养基中继代培养,就可在短期内得到大量的侧芽。在这个途径中,最常用的细胞分裂素是 6—苄基嘌呤,其浓度为 0.5~2 毫克/升。如果同时加入生长素,则常用萘乙酸(0.05~0.5 毫克/升)。为了促进侧芽生长,也常加入赤霉酸(0.5~2 毫克/升)。目前已有近百种植物,可以通过这种途径形成大量侧芽,如苹果、葡萄、月季等。

  2. 诱导不定芽的形成这种途径有两种不同表现:一种是由外植体先形成愈伤组织,再由愈伤组织分化成不定芽,如菊花花瓣和叶片的培养;另一种是直接从外植体产生芽原基,再进而发育成不定芽,如竹节秋海棠的叶片培养。不定芽的形成,与培养基中激素的配比与用量有密切关系,培养时, 要参考资料或通过实验才能决定。

  3. 胚状体的形成在组织培养中,由外植体或愈伤组织产生的类似胚的一种结构,叫胚状体。胚状体具有胚芽和胚根。在诱导胚状体形成时,一般使用胚、分生组织或生殖器官作为外植体。其培养基中,大多加入 2,4—D。目前已有 150 多种植物可以产生胚状体,如胡萝卜、芹菜等。

(五)试管苗的生根

在锥形瓶或试管内培养基中的外植体,通过培养与分化,形成幼苗。这种幼苗叫试管苗。经“侧芽增殖”和“诱导不定芽形成”两种途径所生长成的试管苗,一般只长苗而不生根。因此,要更换一次培养基诱导生根。诱导生根的培养基中,通常加入萘乙酸,浓度为 0.1~10 毫升/升。

在更换培养基后,要把盛装试管苗的瓶口打开,上盖 1~2 层纱布,便于通气。并适当加强光照以增强试管苗的自养能力。大约经过 10 天左右,会生出根来。

(六)移栽

当试管苗的根原基形成突起或形成几毫米长的短根时,把苗从锥形瓶或试管中取出,洗去所附着的培养基,栽入含有营养液的蛭石、炉渣或草炭等人工基质中继续培养。移栽后,应保持高湿度,避免阳光直射和过大的温度波动。经过一段逐步锻炼的过程,再定植到土壤中。至此,组织培养工作全部完成。整个过程约需 2~3 个月。

三、注意事项

(一)做好灭菌工作

灭菌是组织培养能否成功的关键因素。凡用具用品、培养基,植物材料以及移栽用的人工基质等,都需进行灭菌,以避免发生细菌和真菌污染。

(二)注意使用植物激素的种类与用量

在外植体和试管苗的生长分化过程中,必须使用植物激素进行调节。不同种类的植物激素或同一激素的不同浓度,对外植体和试管苗的生长分化具有不同的调节作用。因此,在使用植物激素时,种类和用量必须严格遵照培养基配方的规定,不可随便变更。

(三)做好记录

组织培养的记录内容主要有培养基的配制、植物材料的选择、接种时间、外植体生长分化情况、试管苗生根时间、移栽时间、培养过程中发生的问题

及处理方法等。